在微生物檢驗操作過程中，要保證檢測環境(如超淨臺、檢測室)以及所用工器具的潔淨程度，同時保證人員各種操作的規範性，儘量保證其無菌性，防止因人爲原因操作失誤而出現誤差結果，同時在適宜溫度進行培養，爲合理決策和指導生產提供依據。下面是yjbys小編爲大家帶來的關於微生物日常檢驗過程中的注意事項的知識，歡迎閱讀。
培養基的滅菌及使用
1.每次配製時，要注意其生產日期是否在保質期內，查看其開瓶日期及瓶口密封性，保證其未變質，並且未吸潮。
2.培養基配製時，稱量要準確，包括鹽水的分裝要準確。
3.一定要保證現配製現滅菌，未滅菌的配好培養基不能長時間放置，更不可隔夜。
4.滅菌時要保證恆溫、恆壓，同時要保證有效的滅菌時間。
5.滅菌過的培養基要冰箱保存，可保存一週，一般不超過 3 天。而且要遵循“先入先出”原則，先配製的要先使用。
6.在使用時，要根據當班次的使用量，用水浴鍋先將培養基溶化爲液態，然後及時調低水浴溫度(先化好的可從水浴取出，放在水浴鍋鍋蓋上)待用，千萬不可長時間使培養基處於高溫狀態。
7.做產品微生物檢測時，傾倒培養基溫度在 45℃左右，不可過燙，避免將菌燙死;也不可過涼，化好的'培養基又結塊凝固，不便於觀察結果。
8.每瓶培養基均要做空白。
9.儘量集中做樣，避免頻繁打開同一瓶培養基瓶塞，增大培養基的污染機率，出現誤差結果。
10.培養基剩餘過少時，可先將其傾倒成空白用板。
檢測環境的維持
一、大環境(檢測室)
1.檢測時，窗戶和空調要關閉，或用酒精對房間進行噴霧消毒，避免房間內空氣流通影響超淨臺內部環境(最好在有通排風系統的恆溫恆溼無菌間進行操作)。
2.如果在原來的原料微生物檢測室進行檢測，要定期開啓紫外燈，對房間進行殺菌。
二、小環境(超淨工作臺)
1.定期清潔初效過濾器，要及時更換。
2.檢測前，將超淨臺內部進行清潔，用 75%酒精進行擦拭消毒，並提前半小時將超淨臺紫外燈打開，對超淨臺內部環境進行殺菌。
3.關紫外燈，開風機，調整合適進風量，風量不可過低。
4.每次檢測後，要對超淨臺內部進行清理、清潔，並用 75%酒精進行擦拭消毒。
5.紫外燈根據其使用壽命要及時更換。
6.檢測同時，要做上相應菌落檢測的環境空白。
7.檢測區域的選擇：
a、一般在距離超淨臺外沿的 1/3-2/3 區域進行無菌操作;
b、要在酒精燈火焰的外焰保護區域進行操作。
工器具的潔淨度
1.玻璃器皿：採用乾熱滅菌方式進行滅菌。
2.檢測用剪刀、勺子等物品要做到檢測專用，不可與其它操作器具混用，使用時，先用75%酒精消毒，再採用灼燒方式進行滅菌。
3.接種針(環)採用灼燒方式進行滅菌，但要注意檢測時要先將接種針(環)進行冷卻。
樣品的採集及檢測
一、保證採樣器具的無菌性
1.玻璃器皿：採用乾熱滅菌方式進行滅菌，保證恆溫、時間足夠(但不可時間過長，容易導致玻璃器皿易裂紋而報廢)。
2.取樣筐：使用前要用75%酒精進行噴灑消毒。
3.取樣勺：要保證其清潔消毒，清潔後用75%酒精進行擦拭消毒。
4.取樣袋：可先用酒精進行擦拭消毒，再在超淨臺用紫外燈照射消毒，(包裝車間要在傳遞窗用紫外燈照射消毒)。
5.電子稱表面用 75%酒精消毒。
二、人員操作
1.保證手部的清洗、消毒：取樣前及檢測前都要先洗手再消毒。
2.取樣要具有代表性(隨機樣、目的樣、綜合樣)且要標示清楚。
3.取樣完畢，不可在車間逗留，要及時將樣品放入超淨臺，對其外表面進行紫外燈照射消毒。
4.在要求的檢測區域進行操作。
5.檢測前，要用 75%酒精棉球對樣品袋口部進行擦拭消毒，再開口。
6.往鹽水瓶加樣品時，要注意勺子或袋子儘量不接觸瓶口。
7.樣品計量要準確，稀釋倍數也要準確(1mL 吸管不允許將管口敲掉)，進行 100 倍稀釋時，1mL 吸管要伸入鹽水中，不可以將樣品從管壁流下去，同時要避免將管底部捅破。
8.鹽水溫度以 40℃左右爲宜，不能過熱，會將部分微生物燙死;也不能溫度太低，不能將樣品溶解完全。
9.進行稀釋時，要搖勻，保證溶液的均一性。
10.傾倒平皿時，要注意培養基瓶口不要接觸到平皿;傾倒的培養基要適量，不可以太少，在培養過程中易幹掉，微生物亦死亡，以 15mL 左右爲宜。
11.做大腸菌羣樣時，要提前將乳糖膽鹽培養基培養管按需要量備好，放入超淨臺對外表面進行紫外線滅菌。
12.接二步時，要注意先將接種針(環)進行冷卻，避免出現接不上菌落的情況，導致無法判斷、確認。
13.檢測完畢，及時放入相應培養箱進行培養，並清理清潔超淨臺。
微生物的培養
1.在培養過程中，要隨時監控培養箱溫度，保證其在適宜的溫度進行培養。
2.要按照《微生物檢驗規範》要求及時觀察結果，出現異常，要及時分析原因進行反饋。
