溶血標本要重新抽血的原因

許多病人甚至大夫護士不理解,至少不全面理解,溶血了的標本爲什麼檢驗科總是難爲人,要重抽。所謂標本溶血是檢測標本在採集、運輸及儲存過程中紅細胞破裂, 血紅蛋白釋放至血清或血漿中而導致的溶血現象。下面是yjbys小編爲大家帶來的關於溶血標本爲什麼常常要重抽的知識,歡迎閱讀。

溶血標本要重新抽血的原因

  1.對生化項目的影響

爲什麼會發生溶血現象呢?引發溶血現象的原因有很多,包括機械性強力振盪、突然低溫冷凍、過酸或過鹼,以及酒精、乙醚、皁鹼、膽鹼鹽等均可引起溶血。抽血時壓脈帶結紮時間過長,抽吸力過大,抽血速度過快,抽血困難,注射器與針頭連接不緊密,採血管中混入空氣。再加上存儲血液的試管清洗不徹底,離心機速度過快等原因都可能造成血液標本溶血。研究發現,在醫源性因素所致的標本溶血中,標本存儲或運輸不當佔4.2%,靜脈堵塞佔6.9%,採血速度過快佔83.8%,原因不明佔5.1%。

研究觀察發現K LDH ALT、AST、TBIL、DBIL 、CHO、CK、TP、ALB CREA等水平均顯著高於對照組,ALP、GLU、等水平顯著低於對照組,差異有統計學意義(P<0.05)。 但兩組樣本TG、UA、BUN比較差異無統計學意義。導致結果變化的原因不盡相同:紅細胞內的K離子濃度顯著高於血漿中K離子濃度,紅細胞內的Na離子濃度顯著低於血清中Na離子濃度,故溶血使K濃度增高 Na濃度降低。人體紅細胞中AST是血漿的.38倍,而ALT僅爲血漿的7倍,因此雖ALT與AST溶血時均偏高,但對AST的影響遠高於ALT。膽紅素試驗一般採用重氮法檢測,最後生成紅色的偶氮膽紅素,主要波長540-560nm有光吸收,血紅蛋白與重氮試劑反應形成的產物破壞偶氮膽紅素,因此溶血對重氮法測膽紅素存在負面干擾,使得TBIL 與DBIL測定結果偏低。但該作用較輕微,而血紅蛋白的測定波長540-550nm的光吸收直接影響TBIL DBIL.當溶血時大量血紅蛋白進入血清使得測定結果偏高。酶法測定CREA,在肌酐氨基水解酶的催化下肌酐水解成醌亞胺,其在546nm吸光度上升,吸光度的變化與肌酐含量成正比。血紅蛋白的亞鐵血紅素具有過氧化物酶的作用,促進醌亞胺的生成且血紅蛋白的光吸收540-550nm與醌亞胺的546nm接近,二者共同引起溶血標本中肌酐顯著升高。

  2.對血常規的影響

紅細胞計數、紅細胞平均血紅蛋白濃度、平均紅細胞容積、紅細胞平均血紅蛋白、紅細胞體積寬度、血細胞比容、中性粒細胞、淋巴細胞百分比、血小板計數、平均血小板容積、血小板比容、血小板分佈寬度、指標比較中,差異均有統計學意義(P0.05)。

當溶血出現後,白細胞、紅細胞及血小板均能夠釋放影響檢驗效果的成分進入血清,對檢測結果乾擾極大。同時,標本溶血後大量破壞了紅細胞,這使得紅細胞測定結果偏低,且破裂的紅細胞體積低於紅細胞完整體積時,紅細胞平均容積也隨之遞減,繼而也影響了血細胞比容的測定結果。然而,血紅蛋白檢測時先在血液中加入溶血劑,這可以使所有紅細胞溶解併產生血紅蛋白,血常規紅細胞參數干擾因素分析因此標本溶血現象並不會影響血紅蛋白的測定結果。紅細胞與對平均血紅蛋白及紅細胞平均血紅蛋白濃度是根據紅細胞數、血紅蛋白及血細胞比容計算而出,所以兩項結果顯著偏高。紅細胞體積寬度是反映紅細胞體積特異性指標,它能夠提示出紅細胞分佈情況,當破裂的紅細胞碎片進入紅細胞時可導致紅細胞體積失調,繼而增大紅細胞體積寬度。兩組白細胞計數對比無明顯差異,而在淋巴細胞百分比及中性粒細胞方面,中性粒細胞受外力作用破壞而產生裸核,易被設備計作淋巴細胞,繼而造成中性粒細胞降低而淋巴細胞百分比提升。

  3.對凝血項目的影響

樣本溶血(血紅蛋白濃度達到4 g/L)後的PT、APTT及Fib數值均明顯高於溶血前的數據,TT低於溶血前數據,差異均具統計學意義(P<0.05)

所以在標本採集,保存,運輸中儘量預防溶血現象的發生,首先要規範血液檢測過程,採集血樣時,避免止血帶過度束縛,控制好血液進入試管中的速度,以免因過度振盪破壞血細胞。此外,還需保證採血設備的清潔度,其操作要按照實驗室規範進行。血液樣本採集後要注意採用科學合理的方法進行保存,防止血液溶血現象的發生。才能在檢測後得到一個真實的數據。